虽然一“墩”难求,但是间充质干细胞的漂亮软骨球立刻有!
在大多数干细胞实验研究中,诱导分化成骨细胞、脂肪细胞、软骨细胞已经成为鉴定其分化潜能的金标准。今天我们将来介绍一下成软骨诱导分化操作!
⭐ 成软骨诱导分化
软骨的破坏、缺失是骨关节炎(Osteoarthritis,OA)在内的多种骨科疾病的重要病理改变。由于软骨特殊的解剖及组织特性,如缺乏血管和淋巴管的分布,使得其自我修复能力异常不足,因此通过人工方法修复软骨破坏具有重要临床意义。
近年来,随着间充质干细胞(MSC)的发现和研究深入,其来源广泛、良好的增殖能力、多分化潜能、与各种3D支架材料具有良好的生物相容性等优良特性,使得其在软骨修复应用中具有令人期待的应用潜力。
✔ MSC成软骨分化的过程
MSC首先收回其突起,聚集成团,这个团中间的细胞经分裂分化转变成一种大而圆的细胞,即成软骨细胞;成软骨细胞产生基质和纤维(主要为II型胶原蛋白),当基质的量增加到一定程度时,成软骨细胞被分隔在陷窝内,分化为成熟的软骨细胞。
✔ 体外诱导成软骨分化的鉴定
主要是形态学观察、阿利辛蓝染色,以及检测成软骨的标志物——II型胶原蛋白来进行,包括通过免疫组化、Western Blot检测II型胶原蛋白的表达,以及RT-PCR检测II型胶原蛋白的mRNA的表达等不同的角度进行鉴定;而阿利辛蓝则主要检测成软骨细胞内酸性粘多糖。
OriCell®间充质干细胞成软骨诱导分化阿利辛蓝染色效果
大鼠骨髓间充质干细胞
人骨髓间充质干细胞
小鼠脂肪间充质干细胞
⭐材料&方法
01 所需材料
OriCell®间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒
◆ OriCell®间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒(套装内含基础培养基、成软骨诱导添加物、阿利辛蓝染色液)
◆ 4%多聚甲醛溶液或10%福尔马林溶液
02 诱导分化操作步骤
① 将3~4×105个待诱导细胞转移到15mL离心管中,20℃,250×g离心4min。
② 吸去上清。加入0.5mL成软骨诱导分化预混液,重悬上一步离心所得沉淀,20℃,150×g离心5min。
③ 重复步骤2,再次清洗细胞。
④ OriCell®间充质干细胞成软骨诱导分化添加物II(以下简称添加物II)的添加,按照比例(1mL成软骨诱导分化预混液中加入10μL添加物II),吸取实验所需剂量的添加物II,加入相应体积的预混液中配制成成软骨诱导分化完全培养基,轻柔吹打混匀。
⑤ 将步骤3所得细胞沉淀用0.5mL成软骨诱导分化完全培养基重悬,20℃,150×g离心5min。
⑥ 拧松离心管盖以便于气体交换。将其竖立放置于37℃、5%CO2、饱和湿度的CO2培养箱中培养。
⑦ 当细胞团出现聚团现象时(一般为24h或48h后,视实际情况而定),轻弹离心管底部使软骨球脱离管底悬浮在液体中。
⑧ 自接种开始计算,每隔2~3d给细胞换用新鲜的成软骨诱导分化完全培养基,每管约0.5mL。
⑨ 持续诱导,直至管内形成直径1.5~2mm的软骨球,即可准备切片染色。
✔ 注意事项
吸取添加物II之前需短暂离心试剂管,使试剂聚集于管底以便取用。
务必将添加物II分装保存在-20℃以下,避免反复冻融,可保存12个月。
加入添加物II的成软骨诱导分化完全培养基务必现配现用,4℃保存不可超过12h。
步骤6,不需要吸去上清或重悬细胞;24h之内不要晃动离心管。
步骤8,每次更换培养基后,都需轻弹离心管,使软骨球脱离管底悬浮在液体中;且更换培养基后务必拧松离心管盖再放入培养箱中。
03 软骨球切片染色操作步骤
注意:本步骤以石蜡切片染色为例。若使用冰冻切片,请遵照切片机使用规程。
① 固定。诱导形成的软骨球用1×PBS清洗后,浸泡于4%多聚甲醛溶液(或10%福尔马林溶液),固定30min以上。
注意:固定液需现配现用。
② 脱水。固定好的软骨球使用梯度浓度酒精脱水,方式如下,每一阶段30min。
50%酒精→70%酒精→80%酒精→95%酒精→无水酒精。
注意:
脱水必须在有盖的容器中进行,防止吸收空气中的水分。
软骨球不要在酒精中浸泡太久,易碎裂。
在更换酒精时,可吸出低浓度酒精,再加入高浓度酒精。避免移动增加软骨球碎裂的风险。
③ 透明。因酒精和石蜡不相溶,所以脱水后需经二甲苯过渡。方式如下:
Ⅰ 二甲苯和无水酒精按体积比1:1混匀。将软骨球浸泡其中2h。
Ⅱ 将软骨球浸泡在纯二甲苯中1.5h。
Ⅲ 更换新的二甲苯,继续浸泡1h。
注意:
透明必须在有盖的容器中进行,防止吸收空气中的水分。
透明过程中,如果软骨球周围出现白色雾状气泡,说明其中水未被脱净。应重新放回酒精中脱水再透明。
④ 浸蜡。为了除去软骨球中的透明剂,使石蜡渗透到内部以便包埋,需要浸蜡处理。
Ⅰ 二甲苯和石蜡按体积比1:1混匀。将软骨球浸泡其中,再一起放置于40℃烘箱中40min。
Ⅱ 将软骨球浸泡在纯石蜡中,放置于55℃烘箱中30min。
注意:
浸蜡尽量保持在较低温度中进行,石蜡不凝固即可。
温度要恒定,不可忽高忽低。
⑤ 包埋。将软骨球取出,置于模具中。倒入石蜡,静置冷却。待石蜡充分冷却成形,取出,修整蜡块。
⑥ 切片。连续切片,每片厚度3μm。
⑦ 粘片。将软骨球切片用粘贴剂粘附于载玻片上,在35℃烘箱中烘干。
⑧ 脱腊。
Ⅰ 纯二甲苯浸泡切片15min,更换新的二甲苯浸泡切片10min。
Ⅱ 二甲苯和无水酒精按体积比1:1混匀。浸泡切片10min。
Ⅲ 依次使用 95%、85%、70%、50%酒精浸泡切片10min,晾干。
⑨ 染色。
Ⅰ 在晾干的切片上滴加阿利辛蓝,37℃染色1h。
Ⅱ 用自来水冲洗载玻片5min,晾干。
⑩ 显微镜下观察阿利辛蓝染色效果。阿利辛蓝染色部分显示的是软骨组织中的内酸性粘多糖。
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