产品中心
技术交流
扫描二维码
脑原位肿瘤模型构建全攻略从流程到实操
确定研究的具体方向，如脑胶质瘤、脑转移瘤或特定基因突变的肿瘤。 选择适合的动物模型（如小鼠、大鼠等），考虑其免疫背景和肿瘤生长特性。 确定模型构建方法，如细胞移植、基因编辑或化学诱导。 设计对照组和实验组，确保实验的科学性和可重复性。 细胞移植模型 基因编辑模型 化学诱导模型 通过影像学检查（如IVIS Lumina LT）监测肿瘤生长情况。 进行组织病理学分析，验证肿瘤的组织学特征和标志物表达。 收集肿瘤体积、动物生存期、分子标志物等数据，进行统计分析。 结合文献对比，验证实验结果的意义。 材料与设备 小鼠（如C57BL/6或裸鼠，根据实验需求选择免疫背景）。 肿瘤细胞系（如GL261、U87）或患者来源的肿瘤细胞（PDX模型）。 立体定位仪、微量注射器、手术器械。 麻醉剂（如异氟烷）、消毒用品、无菌操作台。 细胞准备 培养肿瘤细胞至对数生长期，确保细胞活力。 用PBS洗涤细胞，调整细胞浓度（通常为1×10^5至1×10^6个细胞/µL）。 PART.02 麻醉小鼠 使用异氟烷或其他麻醉剂麻醉小鼠，确保小鼠处于深度麻醉状态。 固定小鼠 将小鼠头部固定在立体定位仪上，调整头部位置使其水平。 开颅手术 用碘伏消毒小鼠头部皮肤，沿中线切开皮肤，暴露颅骨。 使用牙科钻在目标区域（如前额叶或基底节）钻孔，注意避免损伤脑组织。 细胞注射 用微量注射器吸取肿瘤细胞悬液。 将针头缓慢插入目标脑区（深度根据实验需求调整，通常为2-3 mm）。 缓慢注入细胞悬液（体积通常为2-5 µL），注射完成后保持针头在原位1-2分钟，防止细胞回流。 缝合与恢复 取出针头，用无菌生理盐水冲洗手术区域。 缝合皮肤切口，涂抹抗生素软膏。 将小鼠置于温暖环境中恢复，直至完全苏醒。 PART.03 术后护理 观察小鼠行为状态，确保无感染或其他并发症。 提供充足的食物和水，必要时给予镇痛药物。 肿瘤生长监测 使用活体成像（如荧光或生物发光成像IVIS Lumina LT系统）定期监测肿瘤生长。 记录肿瘤体积和动物生存期。 组织病理学分析 在实验终点处死小鼠，取脑组织进行固定和切片。 通过HE染色或免疫组化分析肿瘤的组织学特征和标志物表达。 脑原位肿瘤模型构建是研究脑肿瘤的重要工具，但其成功与否取决于实验设计的科学性、操作的规范性以及数据分析的严谨性。在构建过程中，需综合考虑研究目标、模型选择、伦理规范等因素，以确保研究结果的可靠性和应用价值。 联系热线：15021163010 立即扫码 惊喜时刻 分享该条微信至朋友圈并关注雏田生物微信公众号，即可获得独属生物人的浪漫:生物元素精美徽章盲盒一份(5个款式随机发货） (请将截图朋友圈，发送截图邮件至:marketing@hinatabio.com,并附上您的联系方式和邮寄地址)
粤公网安备 44010602000473号
粤ICP备09063491号
营业执照
